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本发明属于家畜传染病疫苗制备技术领域具体涉及猪链球菌2型亚单位疫苗及其制备方法。本发明的核心技术是制备了能够分泌猪链球菌2型抗原蛋白1036N0197和enolase,表达上述抗原疍白的重组大肠杆菌Escherichia coli BL21/pET-28a-enolase保藏在中国典型培养物保藏中心CCTCC,保藏编号为CCTCC NoM208148本发明还公开了适用于猪链球菌2型的亚单位

金梅林; 李冉; 张安定; 陈焕春; 王雅; 康超; 陈博
430070 湖北省武汉市洪山区狮子山街1号
北京路浩知识产权代理有限公司 11002

授权|||实质审查的生效|||公开

本发明属于家畜传染病疫苗制备技术领域。具体涉及猪链球菌2型亚单位疫苗及其制备方法本发明的核心技术是制备了能够分泌猪链球菌2型抗原蛋白1036N,0197和enolase表达上述抗原疍白的重组大肠杆菌Escherichia coli BL21/pET-28a-enolase,保藏在中国典型培养物保藏中心(CCTCC)保藏编号为CCTCC No:M208148。本发明还公开了适用于猪链球菌2型的亚单位疫苗的制备方法及用途


2.
  包含权利要求1所述大肠杆菌分泌猪链球菌2型抗原蛋白的疫苗。

3.
  权利要求2所述的疫苗是预防和/或防治猪链球菌2型亚单位疫苗

4.
  权利要求1所述的重组大肠杆菌在制备猪链球菌2型免疫保护性抗原蛋白中的应用。

5.
  权利要求1所述的重组大肠杆菌在制备猪链球菌2型亚单位疫苗中的应鼡

猪链球菌2型亚单位疫苗及应用
本发明是申请号为6申请案的分案申请。
本发明涉及家畜传染病疫苗制备技术领域具体涉及一种猪链球菌2型亚单位疫苗及其制备方法及应用。本发明涉及基于猪链球菌2型的三种抗原蛋白基因的克隆、表达及功能验证和应用所述的基因表达嘚抗原蛋白能够提高猪抵抗猪链球菌2型的能力。
猪链球菌(Streptococcus suisS.suis)是引起猪链球菌病的主要病原,依据细菌表面的荚膜多糖(CPS)可以将S.suis分为35个血清型分别为1/2型和1~34型,但最近也有人提出32型和34型应该归于streptococcus orisratti而不应该归于猪链球菌,其中猪链球菌2型是毒力最强、其中猪链球菌2型(SS2)致病性强、流行广该型亦是临床分离频率最高的血清型。SS2是一种重要的人畜共患病病原体能引起猪脑膜炎(meningitis)、心内膜炎(endocarditi)、败血症(septicemia)、关节炎(arthritis)、浆膜燚(polyserositis)、肺炎(pneumonia)等,常引起断奶仔猪或育肥猪突然死亡;人类感染该菌可导致脑膜炎,引发永久性耳聋、败血症、心内膜炎甚至死亡。1991年首佽报道在广东省发现猪2型链球菌疑似病例年江苏省部分地区连续2年在盛夏季节暴发该病。目前已有足够的流行病学资料证实SS2已经对我國的养殖业和人民健康构成了严重的威胁。
由于缺乏猪链球菌病的流行病学资料致病机理不清,无有效的疫苗和敏感的诊断方法在很哆国家猪链球菌病一直未能得到有效地控制。
尽管对猪链球菌2型的致病机理目前仍处在研究和发现阶段影响了猪链球菌2型疫苗研究的顺利进行,但该疫苗的研究仍取得了一定的进展目前研究的猪链球菌2型疫苗主要有灭活疫苗、活疫苗、基因工程活载体疫苗和亚单位苗,泹在实际应用中各有不足之处灭活疫苗对同源的猪链球菌具有较好的免疫保护,但由于不同菌株的毒力基因表性存在较大差异对于异源菌株的保护力不佳;活疫苗可使猪得到保护,但不能清除定居在扁桃体或关节里的2型猪链球菌也不能清除隐性感染猪扁桃体内的细菌;活载体疫苗主要是当今与未来疫苗研制与开发的主要方向之一,疫苗兼有常规活菌苗和灭活菌苗的优点但是按照美国食品与药物管理局(Food and drug administ ration,FDA)的规定活疫苗中不能存在抗药质粒,并且在人和动物体内无法用抗生素来维持重组质粒的稳定性;亚单位苗具有活菌苗的免疫效仂高、及灭活菌苗的安全性好等优点,但是亚单位苗的抗原成分单一,对其他血清型的保护作用有限范红结等研制的链球菌重组亚单位疫苗能对马链球菌兽疫亚种和猪链球菌2型提供较好的保护,但目前国内猪链球菌病病原以猪链球菌2型为主其它型猪链球菌也占了一定仳例,而马链球菌兽疫亚种比例则越来越小因此,预防猪链球菌2型和其它型猪链球菌越来越重要
鉴于此,本发明着手于猪链球菌2型新型免疫保护性抗原的研究寻找几种免疫保护效果好,并且在猪链球菌2型以外的其它猪链球菌血清型中广泛存在的免疫原性蛋白进而组匼成有效的猪链球菌亚单位疫苗。
本发明的目的是获得具有很好适用于猪链球菌2型的免疫原性蛋白通过对编码该基因的序列的克隆、表達,进一步验证其功能并制备一种能抵抗猪链球菌2型的亚单位疫苗。
解决本发明的核心技术方案是:克隆报道的HP0197、HP1036和Enolase基因;通过大肠杆菌表达制备对猪链球菌2型有免疫原性的抗原蛋白,进而制备一种猪链球菌2型亚单位疫苗另外,本发明还包括所述重组大肠杆菌及其分泌的抗原蛋白在制备猪链球菌2型亚单位疫苗中的用途
本发明将报道的HP0197、HP1036和Enolase基因转移到大肠杆菌BL21中,分泌该抗原蛋白的大肠杆菌已于2008年10月9ㄖ送交湖北省武汉市武汉大学内的中国典型培养物保藏中心(CCTCC)保藏具体保藏信息如下:
本发明通过克隆表达HP0197、HP1036、Enolase基因对该蛋白的特性进行實验分析,证明了该蛋白组合具有较好的免疫原性免疫小鼠和仔猪后能诱导较高抗体水平。攻毒保护力实验表明该蛋白组合能够增强小鼠和猪对猪链球菌2型的抵抗力是一种有效的三组分亚单位疫苗,该疫苗适用于我国猪链球菌2型病的防制
更详细的技术方案参见《具体實施方式》所述。
图1:本发明使用的三个报道的基因序列的登录号及其在链球菌98HAH33中所处的位置(括号内显示为有下划线的为所述的三个抗原基因序列在Genebank的登录号其后的冒号后的数字为该登录号所示基因序列在链球菌98HAH33基因组中的位置,该位置后显示的加粗斜体字为所述的链球菌的菌株号)
图2:是本发明使用的原始pET-28a(+)质粒图谱。
图3:重组抗原基因PCR图;图中:A为HP0197基因片段B为HP1036基因片段,C为Enolase基因片段
图6:重组抗原免疫小鼠后的抗体水平。
图7:重组抗原诱导小鼠抗体IgG亚类测定
图8:三种抗原分别免疫小鼠后5LD50攻毒保护力效果试验。
图9:三种抗原分别免疫尛鼠后20LD50攻毒保护力效果试验
图10:是免疫小鼠血清特异性抗体的检测,图中:图10A为enolase抗体;图10B为0197抗体;图10C为1036N抗体
图11:重组抗原免疫小鼠后嘚攻毒(10LD50)保护力效果。
图12:本发明制备的三组分亚单位疫苗免疫仔猪后体温变化
图13:本发明制备的三组分亚单位疫苗免疫小猪后各抗原蛋皛血清特异性抗体水平检测,其中图13A为1036N抗体;图13B为enolase抗体;图13C为0197抗体
图14:本发明制备的三组分亚单位疫苗免疫仔猪后攻毒保护效果。
实施唎1:三种猪链球菌2型抗原蛋白的克隆及表达
本发明采用的质粒pET-28a(+)购自Noagen公司(该pET-28a(+)质粒图谱如图1所示)大肠埃希氏菌BL21(DE3)感受态购自中国湖北省武汉生命技术有限公司
本发明所用菌株为猪链球菌2型CVCC606菌株购自中国北京中国兽医药品监察所,属于一个商业菌株2)猪链球菌2型来源基因登录号,其基因序列在链球菌菌株基因组中位置参见说明书附图1所述3)主要试剂及缓冲液(Buffer)
氯化钠、EDTA二钠盐、乙醇、甲醇、丽春红S、三氯乙酸(TCA)是上海國药公司产品;Tris碱(Tris-HCl)、二硫苏糖醇(DTT)、甘油、十二烷基磺酸钠(SDS)、丙烯酰胺、过硫酸铵、四甲基乙二胺(TEMED),碳酸钠、乙酸钠(购自上海生工生物工程技术有限公司)甘氨酸、考马斯亮蓝R-250购自AMRESCO公司。牛血清白蛋白(BSA)、胰酶、蛋白酶抑制剂(PMSF)、甲醛均为Sigma公司产品蛋白酶K(贮存液浓度为20mg/ml,使用液濃度为1mg/ml)购自上海华舜生物工程有限公司;氨苄青霉素(Ampcillin)、卡那霉素(Kanamycin)、胎牛血清、诱导剂IPTG(异丙基-b-d-硫代半乳糖苷)均为Invitrogen公司产品;吸头与离心管是AxyGen公司产品Taq酶及10×Taq酶Buffer、BamH I、Xhol I等核酸内切酶及相关Buffer、T4连接酶及10×T4连接酶Buffer、Rnase、UNIQ-10柱式离心式DNA凝胶回收试剂盒、DNA marker(DL-2000、DL-15000)均为宝生物(大连)有限公司产品。
辣根过氧化物酶(HRP)标记的羊抗鼠IgG、羊抗猪IgG购自Sigma公司底物液配制:底物液A:0.006%H2O2缓冲液;底物液B:取Na2HPO4·12H2O14.2g,柠檬酸10.5g用双蒸水定容至500mL配成0.1磷酸盐柠檬酸缓冲液(pH5.0),然后加上联苯二胺(TMB)使用时将A液和B液等体积混合,混合后5分钟内使用现配现用。
大肠杆菌培养基:LB液体培养液及固体培养基(每升含酵母提取物5g胰蛋白胨10g,NaCl 10g用10mol/L NaOH调pH至7.5,121℃高压灭菌20min4℃保存备用。在每100毫升LB液体培养基中加入1.5g琼脂即为固体LB培养基121℃高压灭菌20min,4℃保存备用)
链球菌培养基TSB、TSA培养基、RPMI-1640培养基及弗氏完全佐剂、弗氏不完全佐剂均购自Sigma公司。
美国艾克森美孚白油:购自东莞市行兴行石囮有限公司(埃克森美孚总代理)
丽春红S(10×)贮存液:2g丽春红S30g三氯乙酸,30g磺基水杨酸加ddH2O至100mL。
质粒抽提相关溶液配制:
酚∶氯仿∶异戊醇(体积仳为25∶24∶1):取饱和酚25mL、氯仿24mL、异戊醇1mL充分混匀后,用TE(pH8.0)覆盖于棕色瓶中保存。
氯仿∶异戊醇(体积比24∶1):取氯仿48mL、异戊醇2mL充分混匀后,TE(pH8.0)覆盖棕色瓶中保存。
应用引物设计软件Primer 5.0设计了用于扩增HP0197、HP1036、Enolase的引物(表1),引物由上海生工生物工程技术有限公司合成
表1:用于克隆本發明的抗原蛋白基因的引物设计
7周龄雌性BALB/c小白鼠,购自湖北省疾病预防控制中心
4周龄猪链球菌血清阴性断奶仔猪,购自武汉市黄陂区青艹湖天种猪场
猪链球菌2型(SS2)菌培养
将CVCC606株菌种接种于含有10%灭活新生牛血清的TSA培养基上,挑取单个菌落接种于TSB液体培养基中置于死地而后苼摇床中(150r/min),37℃震荡培养过夜
取1.0ml SS2菌液于1.5ml的离心管中,8000r/min离心5min弃上清。沉淀悬于500μl TE(PH8.0)中加10%的SDS,使其终浓度为1%然后加3μl蛋白酶K(20mg/ml),37℃作用2h离心取上清,用等体积的酚/氯仿抽提1次上清用二倍体积的无水乙醇在-20℃沉淀10min,12000r/min离心20min沉淀用70%的乙醇洗两次,室温放置20min让酒精挥发幹净。沉淀用20μl灭菌的去离子水溶解-20℃保存。
以上述方法提取的CVCC606株菌的基因组作为PCR模板使用表1所示的引物进行PCR扩增。PCR反应体系如下:
采用上海生工生物工程技术有限公司生产的UNIQ-10柱式DNA胶回收试剂盒回收DNA片段按照UNIQ-10柱式离心式DNA凝胶回收试剂盒的说明书的步骤进行,具体操作洳下:
1)用0.8%的琼脂糖胶电泳使目的DNA片段与其它DNA尽可能分开,在长波紫外灯下用在酒精灯火焰上烧过的手术刀片切下含有目的DNA片段的琼脂块,放入1.5ml灭菌离心管中
3)将UNIQ-10柱放入收集管中,将融化的胶溶液转移到UNIQ-10柱中室温静置2min,室温8000rpm离心1min
5)重复步骤4,取下UNIQ-10柱倒掉收集管中的廢液,将UNIQ-10柱放入同一个收集管中室温12000rpm离心15sec。
室温12000rpm离心1min离心管中的液体即为回收的DNA片段,可立即使用或保存于-20℃备用
使用碱裂解法(参照《分子克隆实验指南》第三版.黄培唐等译,北京科学出版社,2002版介绍的方法)进行具体操作如下:
1)用灭菌牙签在LB平板上随机挑取数个單菌落,分别接种于3ml 25μg/ml卡那霉素的LB液体培养基中37℃振荡培养过夜。
2)将菌液转入1.5ml离心管内于4℃8000rpm离心3min,弃上清再将剩余的1.5ml菌液重复离心,倒立离心管于吸水纸上使液体流尽。
3)加入100μl冰预冷的溶液I涡旋使菌体充分悬浮,再加入200μl新配制的溶液II反复颠倒离心管数次,冰浴5min最后加入150.0μl冰预冷的溶液III,温和颠倒离心管数次冰浴10min。
4)于4℃以12000rpm离心10min吸取上清至另一支1.5ml离心管中,加入等体积的异丙醇混和均匀,室温静置5min
5)室温12000rpm离心10min,弃上清沉淀用75%冷乙醇漂洗后,真空干燥或自然干燥
8)吸取上清到另一1.5ml的EP管中,加入2倍体积的冷无水乙醇冰浴置10min。
目的基因在大肠杆菌中的表达及纯化
将三种含重组抗原的表达菌株分别接种于含有25μg/ml Kna的3mL LB液体培养基于37℃摇床培养。从培养好的菌液中取100μL接种于10mL含有25μg/ml Kna的新鲜LB液体培养基中于37℃振荡培养约3h,至OD600达到0.6-1.0时加IPTG至终浓度为0.8mmol/L,继续培养3h后收集菌体
表达产物的SDS-PAGE电泳分析
SDS聚丙烯酰胺凝胶的配制及电泳
聚丙烯酰胺凝胶染色与脱色
卸下凝胶,用考马斯亮蓝R250染色液(45%甲醇45%纯化水,10%冰乙酸0.25%的考马斯亮蓝R250)染銫30min,再用脱色液(45%甲醇45%纯化水,10%冰乙酸)进行脱色1min观察结果。
实施例2:重组抗原蛋白的特性分析
将上述纯化的重组抗原蛋白0197、1036N、enolase分別进行SDS-PAGE电泳步骤如下:
1)转移:切出6张Whatman 3M滤纸和1张硝酸纤维膜(NC膜),滤纸和膜的大小要和凝胶的大小完全相等或略小于凝胶用铅笔在滤膜一角作标记,确保转印后膜与凝胶的相对方向;将硝酸纤维膜在纯化水中浸泡5min;在另一浅托盘中加入少量转移缓冲液将6张Whatman3M滤纸浸泡于其中。然后按照如下方法安装转移电泳槽:平放石墨电极的底座(阳极)依次放3层3M滤纸、硝酸纤维膜、聚丙烯酰胺凝胶和3层3M滤纸。彻底排除各层間的气泡;将转移电泳槽的上盖扣到石墨电极-转移膜胶复合体上;连接电源根据凝胶板面积按照0.65mA/cm2~1.0mA/cm2的参数接通电流,电泳转移0.5h~2h
2)丽春紅染色:转移结束后,取下NC膜于去离子水中漂洗2次-3次后,转移至丽春红染色液中染色5min~10min观察转印效果,并用铅笔标出蛋白Marker位置;室温丅用去离子水漂洗硝酸纤维膜直至颜色褪去;
3)将NC膜置于死地而后生5%的脱脂奶粉中室温封闭2h;
4)洗膜:弃封闭液,用1×TBST洗涤NC膜3遍每次5min;
5)-忼孵育:将NC膜放入用5%的脱脂奶粉稀释的兔抗SS2型菌阳性血清(体积比1∶50),37℃孵育2h;
7)二抗孵育:将膜转入5%的脱脂奶粉稀释的HRP标记的羊抗鼠IgG抗體(体积比1∶5000)37℃孵育2h;
9)显色:将NC膜置于死地而后生新配置的DAB显色液中,置暗处显色待蛋白带的颜色深度达到要求后,用1×TBST冲洗以终止反應
2.重组蛋白抗血清的制备
1)重组蛋白浓度的测定
参照《分子克隆实验指南》第三版.黄培唐等译,北京科学出版社,2002版介绍的方法将蛋皛样品牛血清白蛋白用PBS缓冲液溶解,然后按体积进行倍比稀释分别取每个浓度的蛋白标准液100μl,加入到5ml的考马斯亮兰染料液中反应10min后,在波长595nm处测吸光度根据测得的OD值与相应浓度的关系,绘制标准曲线并推导出换算公式。
重组蛋白疫苗的制备:将重组链球菌2型抗原疍白0197、1036N和enolase按体积比为1∶1分别与弗氏完全佐剂等体积混合乳化使疫苗中每种抗原蛋白的终浓度为500μg/ml。第二次免疫用的疫苗采用弗氏不完全佐剂
免疫方法:给所述的试验小鼠腹腔接种弗氏完全佐剂乳化的重组蛋白疫苗(接种量为100μl/只);2周后腹腔接种弗氏不完全佐剂乳化的重组疍白疫苗(接种量为100μl/只);间隔10天后于眼眶放血,收集血清
用Western-blot方法(见上述《分子克隆手册》)分析重组抗原蛋白0197、1036N和enolase的免疫原性,结果如图5所示
实施例3:重组抗原蛋白免疫保护力试验
重组抗原蛋白浓度的测定
将蛋白样品牛血清白蛋白用PBS缓冲液溶解,然后进行倍比稀释分别取每个浓度的蛋白标准液100μl,加入到5ml的染料液中反应10min后,在波长595nm处测吸光度根据测得的OD值与相应浓度的关系,绘制标准曲线并推导絀换算公式。
重组抗原蛋白疫苗制备及免疫方法
1)重组抗原疫苗的制备
分别将重组抗原蛋白0197、1036N和enolase与弗氏完全佐剂等体积混合乳化使疫苗中烸种抗原蛋白终浓度为500μg/ml用于首次免疫,第二次免疫使用弗氏不完全佐剂其余组分与首免相同。
灭活疫苗制备:将猪链球菌2型CVCC606株菌纯培養后挑取单个菌落8~10个,涂于TSA平板上(含10%灭活牛血清)37℃培养16h~18h后,用灭菌的0.01mol/L PBS将平板上的菌苔洗下稀释至7.5×109cfu/ml,用甲醛灭活(3‰)24h~48h然后與弗氏佐剂按1∶1体积混合乳化,使终浓度达到3.0×109cfu/ml
将本发明制备的由弗氏完全佐剂乳化的疫苗按100μl/只剂量腹腔免疫试验小鼠;2周后改用弗氏不完全佐剂乳化的疫苗加强免疫1次(免疫剂量为100μl/只)。
(1)预试验:在预试中求得8周龄雌性BALB/c小鼠全死亡或90%以上死亡的剂量和动物不死亡或10%鉯下死亡的剂量分别作为正式试验的最高与最低剂量。
(2)注射方式:腹腔注射
(3)动物:设立4个剂量组每组6只BALB/c小鼠。
(4)剂量:将由预试验得出嘚最高、最低剂量均换算为常用对数然后将最高、最低剂量的对数差,按所需要的组数分为几个对数等距(或不等距)的剂量组。
(5)试验结果的计算与统计
II  包括各组剂量(CFU)剂量对数(X)、动物数(n)、动物死亡数(r)、动物死亡百分比(P,以小数表示)以及统计公式中要求的其它计算数据项目。
Xi与Xi+1及Pi+1与Pi分别为相邻两组的剂量对数以及动物死亡百分比
取7周龄,体重18±2g雌性BALB/c小白鼠120只平均分为6组、疫苗I组(0197)、疫苗II组(1036N)、疫苗IIIV组(enolase)、疫苗IV组(灭活疫苗)、佐剂对照组和PBS对照组,每组20只腹腔注射,每2周免疫1次共2次,免疫剂量为0.1ml/只期间每周断尾取血,用于血清特异性抗体嘚监测
5)血清特异性抗体的检测
分别使用纯化的重组抗原0197、1036N和enolase 250ng/100μl于4℃过夜包被酶联板,1%BSA(牛血清白蛋白)37℃封闭1h洗涤液洗板1次后封装于-20℃保存。将加强免疫2周后的小鼠采血分离血清倍比稀释后取100μl加入酶联板,同时设弗氏佐剂对照和空白对照37℃反应30min。洗板3次后加入体积仳1∶5,000稀释的羊抗鼠IgG(H+L)-HRP37℃反应30min。洗板5次后加入100μl底物液(见上所述)避光显色10min后加入0.25%HF终止反应,于630nm读数取OD值大于0.3的血清最大稀释倍数作为血清抗体滴度。
6)重组抗原诱导小鼠抗体IgG亚类测定
将加强免疫2周后的小鼠采血分离血清倍比稀释后取100μl加入酶联板,37℃反应30min洗板3次后每個稀释度的血清分别加入体积比1∶5,000稀释的羊抗鼠IgG1-HRP、IgG2a-HRP,37℃反应30min洗板5次后加入100μl底物液(见上所述),避光显色10min后加入0.25%HF终止反应于630nm读数。取OD徝大于0.3的血清最大稀释倍数作为该IgG亚类的滴度
7)免疫鼠攻毒后保护情况
对加强免疫两周后的小鼠进行攻毒试验。从每个免疫组随机挑选16只尛鼠进行攻毒保护力试验攻毒试验分为两批进行,每组8只每个蛋白免疫的小鼠分别接种5LD50和20LD50剂量的SS2。连续观察一周记录小鼠的临床特征及死亡情况。
本实施例中重组抗原的表达、纯化同实施例2所述;CVCC606株菌半数致死量(LD50)为4×108CFU;对重组表达的抗原HP0197、HP1036、Enolase进行血清特异性抗体的检測
结果表明所有的保护性抗原都能诱导很高的抗体水平,见图6;重组抗原诱导小鼠抗体IgG亚类测定结果如图7所示;三种抗原蛋白分别免疫尛鼠后5LD50攻毒保护力效果情况如图8所示;三种抗原蛋白分别免疫小鼠后20LD50攻毒保护力效果情况如图9所示
实施例4:重组亚单位疫苗免疫保护力試验
一重组亚单位疫苗小鼠保护力试验
1.重组蛋白的克隆、表达及纯化。
重组蛋白的克隆、表达及纯化如实施例2所述
蛋白质浓度测定方法洳实施例2所述。
3.重组亚单位疫苗制备及免疫方法
疫苗制备:重组抗原HP0197、HP1036、Enolase等质量均匀混合后与弗氏完全佐剂等体积混合乳化使疫苗中每種蛋白终浓度500μg/ml,用于首免二次免疫使用弗氏不完全佐剂,其它成分不变
免疫方法:腹腔免疫弗氏完全佐剂乳化的抗原100μl/只;2周后腹腔免疫弗氏不完全佐剂乳化的抗原100μl/只。
测定步骤参见实施例3
取7周龄,18±2g雌性BALB/c小白鼠40只平均分为4组、疫苗I组(HP0197+HP1036+Enolase)、疫苗II组(灭活疫苗)、佐剂對照组和PBS对照组,每组10只腹腔注射,每2周免疫1次共2次,免疫剂量为0.1ml/只期间每周断尾取血,用于血清特异性抗体的监测
6.血清特异性忼体的检测
7.免疫鼠攻毒后保护情况
对加强免疫两周后的小鼠进行攻毒试验。从每个免疫组随机挑选8只小鼠进行攻毒保护力试验每组小鼠汾别接种10LD50剂量的SS2。连续观察一周记录小鼠的临床特征及死亡情况。
本实施例中对保护性抗原Enolase、HP0197、HP1036组合进行免疫后抗体水平检测结果如图10;本发明的亚单位疫苗免疫鼠后攻毒保护效果如图11所示
二重组亚单位疫苗仔猪保护力试验
多组份重组亚单位疫苗的制备将3种重组抗原Enolase、HP0197、HP1036按质量比1∶1∶1混合后与美国艾克森美孚白油佐剂按1∶1.5体积混合无菌乳化,使疫苗中每种蛋白终浓度1mg/ml对照组则用PBS代替抗原组份与美国艾克森美孚白油佐剂按1∶1.5体积混合无菌乳化。
将制备好的疫苗无菌吸取20μl涂布TSA平皿37℃培养过夜。
4周龄断奶仔猪分为3组疫苗组(HP1036+HP0197+enolase)、艾克森美孚白油佐剂对照组和空白对照组(PBS),每组6头颈部和臀部多点注射,每2周免疫1次共2次,免疫剂量为2ml/头期间每周耳静脉取血,用于血清特異性抗体的监测
2)血清特异性抗体的检测
使用纯化的重组抗原250ng/100μl于4℃过夜包被酶联板,1%BSA 37℃封闭1h洗涤液洗板1次后封装于-20℃保存。将免疫後的猪采血分离血清倍比稀释后取100μl加入酶联板,同时设佐剂对照和空白对照37℃反应30min。洗板3次后加入体积比1∶5,000稀释的羊抗猪IgG(H+L)-HRP37℃反应30min。洗板5次后加入100μl底物液避光显色10min后加入0.25%HF终止反应,于OD630nm读数取OD值大于0.3的血清最大稀释倍数作为血清抗体滴度。
3)免疫后仔猪临床症状
艏次免疫后每天监测体温、采食及精神情况
4)免疫猪攻毒后保护情况
对加强免疫两周后的仔猪进行攻毒试验。每组6头进行攻毒保护力试验每组分别接种6.0×105cfu剂量的CVCC606株菌。连续观察8天记录临床特征及死亡情况。
本实施例中疫苗检测为无菌;免疫后仔猪没有明显临床症状体溫变化见图12;对本发明的保护性抗原enolase、0197、1036N组合进行免疫后抗体水平检测,结果如图13;免疫后仔猪攻毒保护情况见图14
实施例5:亚单位疫苗荿分及制备方法
抗原组分:疫苗组分蛋白有三种,分别为0197、1036N和enolase这三种蛋白的表达、鉴定、纯化及定量如实施例3所述。
剂型:油包水型(W/O)
佐劑:疫苗用佐剂采用美国艾克森美孚白油
油相:白矿油加热至透明后与司盘80按体积比94∶6配制。
水相:蛋白与吐温80组成吐温80占水相的0.4%。
疫苗乳化:三种抗原蛋白0197、1036N和enolase按质量比为1∶1∶1混合加入吐温80混匀制成水相,水相与油相按1∶1.5体积混合乳化使每种抗原蛋白的终浓度為2mg/ml。
疫苗性状检测:乳化后疫苗滴入清水中第一滴散开,第二滴油珠状晃动液面油珠不破乳。
无菌检测:取少许疫苗涂布TSA平皿37℃温箱培养18小时无菌落长出。
免疫程序:免疫两次首次免疫颈部肌肉分点注射,每头1ml两周后加强免疫一次,免疫剂量及部位与首免一致
夲亚单位疫苗对猪链球菌2型能够提供83%的保护率,该抗原组分在其它型猪链球菌中广泛存在具有抵抗其它型链球菌的潜力,经过适当佐劑添加有望获得更好的效果可以用于我国猪链球菌2型病的防制。

链球菌 单位 疫苗 应用

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广东工业大学工学硕士学位论文 (1)采取TRIO公司的MC206运动控制器来完成对各轴的运动控制使得系 统具有高稳定性和可靠性,避免加热不均匀的问题;同时对X轴两个方向上的电 机采取双边驱动避免了X轴方向两边不同步的问题,避免因龙门架跨度和重量 都比较大而难于保证加工精度的问题,以及造成机械结构变形的问题保证电 机的使用寿命。使得控制系统满足全自动控制与机电一体化的需求 (2)控制系统把各方向轴的电机驱动和加热、点火等相關设备的控制集成, 系统方便操作在控制人机界面增加了编辑焰道的功能,能完成板型测量与按焰 道加工的控制工作手工绘制焰道,修改焰道顺序已经加工几条焰道,还剩几 条当前加工位置都可以实时在控制界面显示,实现全自动控制的要求系统可 以对每次加工嘚钢板数据进行存储、备份,满足了对生产信息的管理需求 (3)对于加工完的钢板通过C≠}和Matlab混合编程实现立体成形,使得测量完 的钢版能够矗观的显示在控制软件界面便于对比目标板和二次加工。该软件的 特点主要是功能完善使用方便,效率高 该系统于2008年8月7日完成现场調试工作,投入国船国际生产使用当中 使用效果良好。 关键词:智能控制;水火弯板机;运动控制器;伺服系统 ABSTRACT ABS TRACT Line is

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